Administración nasal en ratas
Existe una especie de microbomba, si se dispone de fondos suficientes, se recomienda considerarla.
Primero, dale una sonda al ratón.
La infusión gástrica en ratas es uno de los métodos de administración de fármacos más habituales. La aguja utilizada para el lavado gástrico se puede comprar en el mercado. El método de operación es similar al de los ratones blancos, sin embargo, el método de captura de ratones es diferente al de los ratones blancos porque son de mayor tamaño.
Las ratas fueron perfundidas mientras estaban despiertas y no requirieron anestesia. La longitud de la aguja de perfusión gástrica de rata es de aproximadamente 6 a 8 cm y el diámetro es de aproximadamente 65438 ± 0,2 mm.
Cuando la rata sea alimentada por sonda, sostenga la jeringa de sonda en su mano derecha, con el pulgar y el dedo medio de su mano izquierda uno frente al otro, y agarre la piel del cuello de la rata de modo que la cabeza de la rata, el cuello y el tronco están en línea recta. No es necesario fijar a la rata. La cola se puede utilizar para administración gástrica. Otras operaciones son las mismas que las operaciones del mouse.
Generalmente, la cantidad de alimentación forzada para ratas es de 1 ml/100 gramos de peso corporal, por lo que está bien que las ratas reciban alimentación forzada con 2 ml. Generalmente, el volumen de administración intragástrica para ratas es de 5 ~ 10 ml/kg. Sin embargo, la concentración del fármaco debe convertirse según la metodología de experimentos con animales: el factor de conversión de una rata de 200 g a un ser humano de 70 kg es 0,018.
En segundo lugar, la inyección intraperitoneal en ratas
La inyección intraperitoneal es un método común de administración de fármacos, especialmente durante la anestesia. El método de anestesia común es la inyección intraperitoneal de fármacos anestésicos.
El método de inyección intraperitoneal en ratas es básicamente el mismo que en ratones.
1. Las ratas pueden inyectarse por vía intraperitoneal con jeringas del nº 5,5 al nº 7.
2. Durante la inyección intraperitoneal, sostenga la jeringa con la mano derecha, agarre la cola de la rata con el dedo meñique y el anular de la mano izquierda y agarre el cuello de la rata con los tres restantes. dedos para mantener la cabeza de la rata hacia abajo. De esta manera, los órganos de la cavidad abdominal caerán naturalmente hacia el tórax, evitando daños al intestino grueso, al intestino delgado y a otros órganos cuando se inserta la jeringa. La aguja debe insertarse con cuidado para evitar perforar los órganos abdominales.
3. Especialmente en ratas con menor peso corporal, la aguja puede pasar una distancia corta debajo de la piel abdominal durante la inyección intraperitoneal. Es mejor insertar la aguja desde un lado del abdomen, pasar por la línea media del abdomen y luego ingresar a la cavidad abdominal por el otro lado del abdomen. Después de inyectar el medicamento, saque lentamente la aguja y gírela suavemente para evitar fugas.
4. El volumen de dosificación de la inyección intraperitoneal en ratas es generalmente de 5 a 10 ml/kg.
En tercer lugar, inyección en la vena de la cola de rata.
Esta también es una operación común y un poco difícil. Sin orientación, puede resultar un poco abrumador al principio. Pero se puede decir con certeza que inyectar la vena de la cola de rata es muy fácil siempre que domines el método. En general, la inyección en la vena de la cola en ratas y ratones es bastante difícil. Una vez que adquiera competencia, debería ser más fácil para los ratones inyectarse que para los ratones porque los ratones tienen colas y vasos sanguíneos más gruesos, lo que hace que sea más fácil sentir la inserción de la aguja. Sin embargo, a medida que los ratones envejecen, las escamas de la cola se vuelven más gruesas y se vuelve más difícil inyectar en la vena de la cola en este momento. Se recomienda seleccionar un espacio entre las dos escalas en el punto de entrada de la aguja para facilitar la penetración suave de la punta de la aguja.
Pasos de operación:
1. Primero, se debe arreglar el mouse. El método de fijación más simple es anestesiar a la rata, y luego la rata puede permanecer quieta y funcionar sin problemas. Sin embargo, a menudo necesitamos administrar medicamentos varias veces, incluso si administramos medicamentos una vez, será muy problemático si se anestesia a todos los animales. También debemos considerar el impacto de la anestesia en los resultados experimentales y en los animales. Por tanto, es necesario encontrar otra forma de solucionarlo.
Otro método de fijación es similar al de los ratones. Haz un cilindro, preferiblemente de metal. (Se puede personalizar en una herrería o hojalatería local). En primer lugar, el metal es relativamente fuerte y se puede fijar en un marco de hierro para facilitar su operación. Una sección del cilindro tiene una tapa extraíble con un pequeño orificio en el medio para permitir que sobresalga la cola del ratón (el orificio del medio se puede envolver con cinta adhesiva para evitar que los bordes afilados corten la cola del ratón). La otra sección puede adoptar la estructura de una malla metálica, y la forma de la malla puede adoptar la forma de la cabeza de la bala. La estructura de malla permite el paso de la luz, lo que facilita la entrada de los ratones al cilindro. La longitud del cilindro es de aproximadamente 1,5 a 20 cm y el diámetro es de aproximadamente 5 a 8 cm. Se puede formar una serie de cilindros de diferentes longitudes y diámetros, adecuados para ratones de diferentes tamaños. Durante la operación, el cilindro se puede fijar en el marco de hierro. Un lado de la malla de alambre está ligeramente hacia arriba y el otro extremo retira la cubierta. Agarre la cola de la rata, levántela y deje que la cabeza de la rata se acerque. Cilindro Con un poco de guía, la rata perforará. Ingrese al cilindro, pase la cola de la rata a través del orificio en el medio de la tapa, cubra la tapa y enderece la cola de la rata hacia afuera para continuar con el siguiente paso.
Otro método es utilizar la malla de alambre en la cubierta de la jaula del mouse para fijar directamente el mouse al mouse de arriba. Esto lo hacen expertos. Sólo requiere una o dos inyecciones intravenosas para probarlo, no recomendado.
2. Una vez reparado el ratón, se realiza la inyección. Generalmente, se utiliza una jeringa desechable de 5 ml para sacar la aguja, conectar una aguja para el cuero cabelludo número 5 y pinchar con una aguja para el cuero cabelludo. Personalmente, creo que los pines fijos son más convenientes y rápidos.
3. Llene los vasos sanguíneos de la rata antes de la inyección. Puede limpiarlo con una bola de algodón con alcohol al 75% o remojarlo en agua tibia (generalmente la temperatura del baño de agua es de aproximadamente 45 grados), para que las venas izquierda y derecha de la cola puedan expandirse completamente en aproximadamente 2 minutos, y use el aire caliente de un secador de pelo para soplar la cola. Este método no sólo es rápido, sino también fácil de operar, sino que el método de soplado debe controlarse para evitar dañar al animal. Si los vasos sanguíneos del ratón no están claros, se recomienda remojarlos en agua tibia, pero la temperatura del agua no debe ser alta. Después de remojar en agua tibia durante 2 a 3 minutos, saca la cola de rata y límpiala con un algodón seco. Después de un tiempo, después de que los vasos sanguíneos estén llenos, puede limpiar la bola de algodón con alcohol e insertar la aguja. Si los vasos sanguíneos no están llenos, puede sumergirlos repetidamente en agua tibia. A menos que tenga experiencia en la técnica, nunca se arriesgue a inyectarse.
4. Hay cuatro vasos sanguíneos en la cola del ratón. En general, se considera que las venas izquierda y derecha son relativamente fáciles de inyectar, y estas dos venas se utilizan a menudo para inyecciones con aguja. Generalmente se requiere que el sitio de inserción de la aguja esté cerca del extremo de la cola de la rata, de modo que si la inyección falla, el punto de inserción de la aguja pueda seleccionarse hacia arriba. Sin embargo, el lugar de inserción de la aguja no debe ser demasiado bajo, porque cuanto más baja es la vena, más difícil es operar. Generalmente, el tercio inferior de la cola del ratón es mejor.
5. Lo más importante es conseguir la aguja. Al insertar la aguja, el operador fija la cola de la rata con el dedo índice y el pulgar de la mano izquierda, de modo que la cola de la rata pase por el pulgar y luego se doble hacia abajo, y el punto de inserción de la aguja esté cerca de la uña del pulgar. El ángulo entre la aguja y el vaso sanguíneo es de aproximadamente 30° y el bisel de la punta de la aguja está hacia arriba. Después de perforar suavemente la piel, la aguja inmediatamente se vuelve paralela al vaso sanguíneo. Generalmente, se puede introducir en el vaso sanguíneo de una sola vez. Puede insertar la aguja en el vaso sanguíneo más de la mitad, retirar suavemente el tapón de la aguja y, cuando vea un retorno evidente de sangre, puede inyectar la solución medicinal. En circunstancias normales, no debería haber una resistencia obvia durante el proceso de inyección y los vasos sanguíneos no se abultarán. Al empujar líquidos, sea cuidadoso. Si el vaso sanguíneo se abulta, es porque la aguja no penetró en el vaso sanguíneo, por lo que se debe sacar la aguja inmediatamente y volver a inyectarla. (En circunstancias normales, se puede ver el retorno de sangre. Si no hay retorno de sangre, el 90% no ha ingresado al vaso sanguíneo. No empuje el medicamento, saque la aguja y luego perfore para evitar que la inyección de líquido cause subcutáneo edema en la cola de la rata y aumenta la dificultad de la punción. Si es un líquido coloreado, como Iraq Wensilan, debe prestar más atención)
6. y presione el punto de entrada de la aguja con una bola de algodón seca para evitar que el líquido regrese.
Cuatro. Inyección en la vena lingual de rata
Una rata rara vez toma medicamentos a través de la vena lingual porque necesita poder realizar una cirugía bajo anestesia. No es imposible prescindir de la anestesia, pero no es acorde con el bienestar animal, es fácil fallar y el operador también puede lesionarse.
En general, en el experimento de isquemia miocárdica inducida por pituitrina en ratas, la inyección intravenosa de pituitrina se realiza a través de la vena lingual.
1. La inyección en vena lingual generalmente utiliza una jeringa de 1 ml con una aguja del número 4.
2. Después de la anestesia, fije la rata en posición supina sobre la tabla para ratas y fije los dientes. Sostenga las pinzas para los ojos en la mano derecha, saque suavemente la lengua del ratón y pellizque suavemente la punta de la lengua con el pulgar y el índice de la mano izquierda. Puedes ver que hay una vena clara a ambos lados de la lengua del ratón. Generalmente, el del lado derecho es más suave (soy diestro). Apriete ligeramente la lengua del ratón con la mano izquierda, pero no demasiado para ver las venas con claridad. vasos claramente.
3. Sostenga la jeringa en la mano derecha, con el bisel de la aguja apuntando hacia arriba, formando un ángulo de 15° con los vasos sanguíneos de la lengua, e introdúzcala en los vasos sanguíneos. (La vena lingual es muy poco profunda y la punta de la aguja penetra la piel de la lengua y entra en el vaso sanguíneo). Empuje el líquido suavemente. Si la lengua sobresale, la inyección falló. Es fácil que se produzcan muchos problemas en el punto de inyección y que se forme un hematoma. Es difícil volver a inyectar en esta vena y es mejor elegir otra vena.
4. El flujo sanguíneo de la vena lingual es muy rico. Al retirar la aguja, asegúrese de presionar el punto de inyección con una bola de algodón seca para ayudar a detener el sangrado.
5. La inyección normal en la vena lingual no afecta la alimentación de las ratas.
5. Administración transdérmica en ratas.
En primer lugar, puedes preparar una solución de sulfuro de sodio al 8% o un agente depilatorio casero. Fórmula: sulfuro de sodio: jabón en polvo: almidón es 3:1:7, agregue agua para hacer una pomada en pasta. Utilice un bastoncillo de algodón para aplicar el agente depilatorio en la zona a depilar. Observe el pelo del ratón en la zona y péguelo con un bastoncillo de algodón limpio. Luego sumérjalo en agua limpia para limpiar la zona depilada. Las ratas generalmente usan piel abdominal y los ratones pueden usar piel de la espalda.
6. Administración intratecal en ratas
Existen dos formas de administración intratecal: administración aguda y administración crónica a largo plazo.
Para la administración crónica, específicamente, el tubo PE10 debe insertarse en el espacio subaracnoideo después de que se exponga la membrana atlantooccipital, y luego el tubo PE10 debe insertarse 7,5 cm hasta el nivel de expansión de la cintura, fijarse y suturarse. Se inyectan oligonucleótidos antisentido para que la aguja pueda insertarse directamente en el espacio intervertebral entre L4 y L5. Para la administración a largo plazo, se debe seleccionar la intubación crónica y se debe seleccionar un catéter PE-10 marcado con la profundidad de inserción. La profundidad de inserción debe determinarse en función del tamaño del animal y del segmento de médula espinal que se va a enterrar. Generalmente, el área lumbosacra de una rata de 270-320 g mide aproximadamente 7,5 cm y el área del pecho mide aproximadamente 5-5,5 cm. Administración: corte la aguja de inyección número 4, afílela, insértela en el catéter PE-10 y conecte el otro extremo del catéter a la aguja número 4 de otra jeringa. Al administrar medicamentos, basta con conectar el otro extremo del tubo de acero al catéter PE-10 implantado en el animal.
7. Administración vaginal en ratas.
El método de administración vaginal en ratas es similar al de los ratones. El tracto reproductivo de las ratas es más largo que el de los ratones, por lo que es relativamente más fácil de operar que los ratones. La infección intravaginal de ratones implica la inyección de bacterias infecciosas en la vagina de los ratones. En las primeras etapas de la infección, se utilizó un tubo flexible hecho con una aguja pediátrica en el cuero cabelludo para inyectar al ratón en el tracto reproductivo. Sin embargo, debido a que el tracto reproductivo del ratón es muy poco profundo y la manguera en sí ocupa una parte del tracto reproductivo del ratón, el fluido bacteriano principal se escapa fácilmente. Más tarde, intentamos utilizar un muestreador de 50 ul para tomar 20 ul a la vez y utilizar múltiples métodos de inyección.
Al realizar este tipo de experimento, lo principal es prestar atención a que no se pierda el medicamento o líquido infectado, y puedes inyectarlo varias veces.
8. Administración nasal en ratas
1. Existen dos métodos habituales: gotas nasales y spray.
El spray es en realidad una inhalación atomizada.
La administración nasal no puede conseguir el efecto de la inhalación en aerosol.
La inhalación atomizada requiere equipo atomizador, que generalmente está disponible en los hospitales. Sin embargo, si el hospital no puede prestarlo, también se puede utilizar un humidificador en casa.
Al administrar medicamentos atomizados, los ratones deben colocarse en un recipiente relativamente hermético (por supuesto, debe haber orificios para el aire), para que los ratones puedan estar expuestos al medicamento tanto como sea posible. Parece no ser un recipiente especial y normalmente lo usan ellos mismos. Hecho de plexiglás. Si se requiere la administración de uno en uno, también se puede utilizar un inmovilizador de ratas.
Si no hay requisitos especiales, el tiempo de atomización generalmente es de media hora.
Desde la perspectiva de la distribución del medicamento en el cuerpo, las gotas nasales deben actuar principalmente localmente, mientras que la inhalación en aerosol/aerosol puede permitir que el medicamento ingrese a la tráquea, los pulmones y otras partes, y la situación de absorción debe ser muy diferente.
2. Inoculación intranasal
Después de anestesiar al animal, agarre las orejas del animal con el índice y el pulgar izquierdos, dé la vuelta al cuerpo del animal y colóquelo en la palma de su mano izquierda, con la mano izquierda. punta de su nariz hacia el Operador: sosteniendo la jeringa en su mano derecha, gotea la droga inyectada en la nariz del animal. El volumen de inoculación no debe ser demasiado alto: 0,05 ~ 0,1 ml para ratas (0,03 ~ 0,05 ml para ratones; 2 ml para cobayas y conejos).
¿Cuál es la respuesta?
Jeje.
Mín~ ~ ~