Red de conocimientos sobre prescripción popular - Enciclopedia de Medicina Tradicional China - Principios del análisis de células sanguíneas1. Método de detección combinado de impedancia eléctrica, conductividad de alta frecuencia y dispersión láser. Esta es una nueva tecnología lanzada por Coutler Company en 1987. Las células sanguíneas están suspendidas en el electrolito y una cierta corriente pasa a través de los electrodos internos y externos del sensor. Dado que la impedancia eléctrica de las células sanguíneas es muy alta, cuando las células sanguíneas pasan a través de dos electrodos, la impedancia entre los electrodos aumentará instantáneamente, formando un pulso eléctrico con una amplitud proporcional al volumen de las células sanguíneas. Dependiendo del tamaño del pulso, se puede medir el volumen celular. Al medir los glóbulos rojos, se utiliza un discriminador de pulso para eliminar los pulsos de plaquetas de menor amplitud, dejando intactos los pulsos de glóbulos rojos y blancos. Debido a que la cantidad de glóbulos blancos en la sangre es inferior a 1/500 de los glóbulos rojos, los datos totales se aproximan al recuento de glóbulos rojos. Al medir los glóbulos blancos, se utiliza hemolisina para lisar los glóbulos rojos y luego se cuentan los glóbulos blancos restantes. Al contar plaquetas, reduzca el recuento total del umbral del discriminador de pulso y reste el recuento de glóbulos rojos (incluido el recuento de glóbulos blancos) para obtener el recuento de plaquetas. Debido a que las amplitudes de pulso generadas por diferentes tipos de células con el mismo volumen son las mismas, no se pueden distinguir completamente sólo por el volumen. El análisis de la estructura interna de los leucocitos mediante conductividad de alta frecuencia y dispersión láser puede solucionar este problema. Aunque la pared celular no puede pasar corriente de baja frecuencia, sí puede pasar corriente de alta frecuencia. El tamaño y la densidad de los núcleos celulares son diferentes y su resistencia a la corriente de alta frecuencia también es diferente, por lo que pueden usarse para distinguir los glóbulos blancos. La tecnología de dispersión láser se utiliza principalmente para examinar las características de la superficie y la estructura interna de las membranas celulares. La dispersión láser tiene una gran capacidad para resolver la estructura y densidad de las partículas celulares. Las partículas gruesas producen una dispersión de luz más fuerte que las partículas finas y se pueden distinguir los granulocitos. Las cinco categorías de analizadores de células sanguíneas de las series STKS y MAXM de la empresa estadounidense COULTER adoptan métodos de detección conjunta de método de resistencia, conductividad de alta frecuencia y dispersión láser. 2. El método de detección combinado de dispersión de luz y tinción citoquímica utiliza técnicas de dispersión láser y tinción con peroxidasa para clasificar las células. Los eosinófilos tienen una fuerte actividad catalasa, los neutrófilos son ricos en catalasa en el plasma, seguidos de los monocitos, con pocas células primitivas, mientras que los linfocitos y basófilos carecen de esta especie de enzima. Se diluye adecuadamente una pequeña cantidad de sangre con un líquido hipertónico que contiene detergente y formaldehído y se incuba durante decenas de segundos. En este momento, el agente limpiador destruye las células y las enzimas del plasma leucocitario quedan inmovilizadas. Luego, continuar la segunda reacción, agregar peróxido de hidrógeno y tetrahidronaftol y calentar. En este momento, la catalasa descompone el peróxido de hidrógeno en las células que se van a analizar para producir oxígeno, lo que hace que el tetracloronaftol desarrolle color y precipite en las partículas que contienen la enzima. Las células se clasifican según la dispersión de la luz del rayo láser y según diferentes tamaños de células. Obviamente, los basófilos, los linfocitos y las células blásticas no se pueden detectar porque no contienen esta enzima. Por lo tanto, algunos instrumentos han configurado sistemas de detección de basófilos especialmente y sus canales de medición utilizan el método de diferencia de tiempo para medir con RBC/PLT. lo mismo. Debido a la acción del reactivo, todas las células de la sangre, excepto los basófilos, se lisan. Los basófilos junto con los núcleos desnudos de otras células producen un mapa celular. Los basófilos intactos están dispersos en un ángulo alto y estrecho en la parte superior de la figura y los gránulos desnudos en la parte inferior. Diferentes partículas desnudas tienen diferentes distribuciones en el eje X debido a sus diferentes estructuras. El núcleo único está a la izquierda, con más hojas a la derecha. La relación entre el pico de dispersión angular de los núcleos lobulados y el núcleo único se analiza por computadora, y la relación es el resultado informado por el analizador. Los analizadores TECHNICON H-Series incorporan esta tecnología. 3. Método de detección combinado de impedancia eléctrica y conductancia de radiofrecuencia. Este método utiliza cuatro sistemas de detección para detectar diferentes tipos de células: ① Sistema de detección de linfocitos, monocitos y neutrófilos: agregue un agente hemolítico a la suspensión celular para disolver los glóbulos rojos, de modo que la sangre blanca las células permanecen intactas, con una morfología citoplasmática y nuclear similar a los estados fisiológicos. A medida que las células pasan por el sistema de detección, los glóbulos blancos se detectan mediante una combinación de impedancia eléctrica (que mide el volumen celular) y conductividad de radiofrecuencia (que detecta el núcleo celular y la densidad de partículas). (2) Dos sistemas de detección de eosinófilos y basófilos: agregue un agente hemolítico especial a la suspensión celular para disolver o encoger todas las células excepto los eosinófilos y los basófilos. Luego se cuentan los eosinófilos o basófilos intactos. (3) Sistema de detección de células inmaduras: Añadir aminoácidos sulfatados a la suspensión celular. Debido a sus diferentes ocupaciones, las células inmaduras combinan más aminoácidos que las células maduras y son resistentes a los agentes hemolíticos. Cuando se añade reactivo hemolítico, las células maduras se lisan, dejando sólo las posibles células inmaduras para el recuento. En la actualidad, el NE1500 de Japan East Asia Company y el analizador de células sanguíneas SE9000 de SYSNEX Company se clasifican utilizando este método.
Principios del análisis de células sanguíneas1. Método de detección combinado de impedancia eléctrica, conductividad de alta frecuencia y dispersión láser. Esta es una nueva tecnología lanzada por Coutler Company en 1987. Las células sanguíneas están suspendidas en el electrolito y una cierta corriente pasa a través de los electrodos internos y externos del sensor. Dado que la impedancia eléctrica de las células sanguíneas es muy alta, cuando las células sanguíneas pasan a través de dos electrodos, la impedancia entre los electrodos aumentará instantáneamente, formando un pulso eléctrico con una amplitud proporcional al volumen de las células sanguíneas. Dependiendo del tamaño del pulso, se puede medir el volumen celular. Al medir los glóbulos rojos, se utiliza un discriminador de pulso para eliminar los pulsos de plaquetas de menor amplitud, dejando intactos los pulsos de glóbulos rojos y blancos. Debido a que la cantidad de glóbulos blancos en la sangre es inferior a 1/500 de los glóbulos rojos, los datos totales se aproximan al recuento de glóbulos rojos. Al medir los glóbulos blancos, se utiliza hemolisina para lisar los glóbulos rojos y luego se cuentan los glóbulos blancos restantes. Al contar plaquetas, reduzca el recuento total del umbral del discriminador de pulso y reste el recuento de glóbulos rojos (incluido el recuento de glóbulos blancos) para obtener el recuento de plaquetas. Debido a que las amplitudes de pulso generadas por diferentes tipos de células con el mismo volumen son las mismas, no se pueden distinguir completamente sólo por el volumen. El análisis de la estructura interna de los leucocitos mediante conductividad de alta frecuencia y dispersión láser puede solucionar este problema. Aunque la pared celular no puede pasar corriente de baja frecuencia, sí puede pasar corriente de alta frecuencia. El tamaño y la densidad de los núcleos celulares son diferentes y su resistencia a la corriente de alta frecuencia también es diferente, por lo que pueden usarse para distinguir los glóbulos blancos. La tecnología de dispersión láser se utiliza principalmente para examinar las características de la superficie y la estructura interna de las membranas celulares. La dispersión láser tiene una gran capacidad para resolver la estructura y densidad de las partículas celulares. Las partículas gruesas producen una dispersión de luz más fuerte que las partículas finas y se pueden distinguir los granulocitos. Las cinco categorías de analizadores de células sanguíneas de las series STKS y MAXM de la empresa estadounidense COULTER adoptan métodos de detección conjunta de método de resistencia, conductividad de alta frecuencia y dispersión láser. 2. El método de detección combinado de dispersión de luz y tinción citoquímica utiliza técnicas de dispersión láser y tinción con peroxidasa para clasificar las células. Los eosinófilos tienen una fuerte actividad catalasa, los neutrófilos son ricos en catalasa en el plasma, seguidos de los monocitos, con pocas células primitivas, mientras que los linfocitos y basófilos carecen de esta especie de enzima. Se diluye adecuadamente una pequeña cantidad de sangre con un líquido hipertónico que contiene detergente y formaldehído y se incuba durante decenas de segundos. En este momento, el agente limpiador destruye las células y las enzimas del plasma leucocitario quedan inmovilizadas. Luego, continuar la segunda reacción, agregar peróxido de hidrógeno y tetrahidronaftol y calentar. En este momento, la catalasa descompone el peróxido de hidrógeno en las células que se van a analizar para producir oxígeno, lo que hace que el tetracloronaftol desarrolle color y precipite en las partículas que contienen la enzima. Las células se clasifican según la dispersión de la luz del rayo láser y según diferentes tamaños de células. Obviamente, los basófilos, los linfocitos y las células blásticas no se pueden detectar porque no contienen esta enzima. Por lo tanto, algunos instrumentos han configurado sistemas de detección de basófilos especialmente y sus canales de medición utilizan el método de diferencia de tiempo para medir con RBC/PLT. lo mismo. Debido a la acción del reactivo, todas las células de la sangre, excepto los basófilos, se lisan. Los basófilos junto con los núcleos desnudos de otras células producen un mapa celular. Los basófilos intactos están dispersos en un ángulo alto y estrecho en la parte superior de la figura y los gránulos desnudos en la parte inferior. Diferentes partículas desnudas tienen diferentes distribuciones en el eje X debido a sus diferentes estructuras. El núcleo único está a la izquierda, con más hojas a la derecha. La relación entre el pico de dispersión angular de los núcleos lobulados y el núcleo único se analiza por computadora, y la relación es el resultado informado por el analizador. Los analizadores TECHNICON H-Series incorporan esta tecnología. 3. Método de detección combinado de impedancia eléctrica y conductancia de radiofrecuencia. Este método utiliza cuatro sistemas de detección para detectar diferentes tipos de células: ① Sistema de detección de linfocitos, monocitos y neutrófilos: agregue un agente hemolítico a la suspensión celular para disolver los glóbulos rojos, de modo que la sangre blanca las células permanecen intactas, con una morfología citoplasmática y nuclear similar a los estados fisiológicos. A medida que las células pasan por el sistema de detección, los glóbulos blancos se detectan mediante una combinación de impedancia eléctrica (que mide el volumen celular) y conductividad de radiofrecuencia (que detecta el núcleo celular y la densidad de partículas). (2) Dos sistemas de detección de eosinófilos y basófilos: agregue un agente hemolítico especial a la suspensión celular para disolver o encoger todas las células excepto los eosinófilos y los basófilos. Luego se cuentan los eosinófilos o basófilos intactos. (3) Sistema de detección de células inmaduras: Añadir aminoácidos sulfatados a la suspensión celular. Debido a sus diferentes ocupaciones, las células inmaduras combinan más aminoácidos que las células maduras y son resistentes a los agentes hemolíticos. Cuando se añade reactivo hemolítico, las células maduras se lisan, dejando sólo las posibles células inmaduras para el recuento. En la actualidad, el NE1500 de Japan East Asia Company y el analizador de células sanguíneas SE9000 de SYSNEX Company se clasifican utilizando este método.
4. Método de detección de dispersión de luz polarizada con láser de múltiples ángulos. Este instrumento utiliza esta tecnología para diluir la muestra de sangre con un flujo de envoltura. La estructura interna de los leucocitos diluidos es similar a la del estado natural. Sólo los basófilos presentan ligeros cambios en la estructura celular debido a sus propiedades higroscópicas. La hemoglobina de los glóbulos rojos se separa de las células mediante una alta presión osmótica. Sin embargo, el agua del flujo de la vaina ingresa a los glóbulos rojos, de modo que la estructura de la membrana celular permanece intacta y tiene el mismo índice de refracción que el flujo de la vaina, lo que no afecta la detección de los glóbulos blancos. Al mismo tiempo, el instrumento detecta desde cuatro ángulos la luz dispersada producida por las células que pasan a través del rayo láser. La luz dispersada en ángulo frontal de 0° se utiliza para medir el volumen celular, la luz dispersada en ángulo estrecho de 10° se utiliza para medir la estructura celular, la luz dispersada vertical de 90° se utiliza para medir los gránulos intracelulares y el citoplasma, y la luz despolarizada de 90° que dispersa los eosinófilos separados de otros células.