Introducción al grado de hiperplasia de la médula ósea

Contenido 1 Pinyin 2 Referencia en inglés 3 Descripción general 4 Examen médico del grado de hiperplasia de la médula ósea 4.1 Nombre de la prueba 4.2 Clasificación 4.3 Materiales de laboratorio 4.4 Principio de determinación del grado de hiperplasia de la médula ósea 4.5 Reactivos 4.6 Método de operación 4.7 Valor normal 4.8 Importancia clínica de resultados de laboratorio 4.9 Nota 4.10 Enfermedades relacionadas 1 Pinyin

gǔ suǐ zēng shēng chéng dù 2 Referencia en inglés

Análisis de proliferación de médula ósea 3 Descripción general

La médula ósea es el órgano hematopoyético importante en el cuerpo humano Al extraer médula ósea para su examen, se pueden diagnosticar enfermedades del sistema hematopoyético (como leucemia, anemia aplásica, mieloma múltiple, etc.) y determinar el pronóstico de ciertas enfermedades; (como metástasis óseas de diversos tumores malignos e hiperplasia de la médula ósea, anemia, etc.), y también puede mejorar la tasa de diagnóstico de ciertas enfermedades (como malaria, kala-azar, lupus eritematoso, etc.). El grado de proliferación de células de la médula ósea consiste en observar la proporción de células con núcleo (incluidos los glóbulos rojos nucleados) y glóbulos rojos maduros sin núcleo en el frotis de líquido de la médula ósea bajo un microscopio para determinar la producción de células de la médula ósea y guiar la diagnóstico de enfermedades originadas en el sistema hematopoyético. Cuantas más células nucleadas haya, mayor será el grado de proliferación celular de la médula ósea. 4 Examen médico del grado de hiperplasia de la médula ósea 4.1 Nombre de la prueba

Grado de hiperplasia de la médula ósea 4.2 Clasificación

Examen de citología de la médula ósea> Examen de la médula ósea

4.3 Materiales de prueba de laboratorio

Médula ósea 4.4 Principio de determinación del grado de hiperplasia de la médula ósea

Utilice médula ósea con gránulos ricos, haga una extensión de espesor uniforme y examine los cambios en el citoplasma y la cantidad bajo un microscopio después Tinción mixta de Wright-Giemsa. 4.5 Reactivos

(1) Solución de tinción de Wright: Coloque 1 g de tinte en polvo de Wright en un mortero limpio y seco, agregue de 3 a 5 ml de glicerol, muela durante un tiempo para disolver completamente el tinte en polvo de Wright y agregue metanol unos 50 ml, continúe moliendo por un tiempo, recoja la solución de tinte superior; muela la parte restante con 50 ml de metanol y luego recoja la solución de tinte superior después de repetir varias veces, enjuague el mortero con metanol y viértalo en. la misma botella, y finalmente agregar metanol hasta 500 ml. La solución colorante se debe agitar con frecuencia durante las primeras semanas. Cuanto más tiempo se almacene la solución de teñido, mejor será el efecto de teñido. Además, se debe agregar glicerol al tinte en polvo antes de molerlo para evitar que el tinte en polvo se aglomere durante el proceso de molienda y facilitar su disolución. La solución de tinte preparada sin triturar el tinte en polvo no es adecuada para teñir cortes de médula ósea.

(2) Solución de tinte concentrada Giemsa: Ponga 3,8 g de tinte en polvo Giemsa en 250 ml de glicerina pura, colóquelo en un baño de agua a 60 ℃ durante 2 horas, agregue 250 ml de metanol precalentado a 60 ℃ después de la disolución. y mezcle bien, se almacene en una botella marrón a temperatura ambiente, se puede usar unos días después de la preparación y se puede almacenar durante mucho tiempo.

(3) Tampón fosfato pH 6,5: 1,5 g de dihidrógeno fosfato de potasio, 1,0 g de hidrogenofosfato de disodio, añadir agua destilada hasta 5000 ml. Finalmente corregir el pH a 6,5.

(4) Diluyente Giemsa: Tomar 50ml de solución de Giemsa, añadir tampón fosfato pH 6,5 a 500ml y mezclar bien. Esta solución es la solución de aplicación de Giemsa y se puede utilizar directamente para contratinción de frotis. Al hacer la dilución de Wright, tome de 10 a 20 ml de esta solución y agregue agua destilada a 100 ml y mezcle bien. 4.6 Método de operación

(1) Muestreo de médula ósea: los sitios de muestreo incluyen el esternón, la apófisis espinosa, la cresta anterior o la cresta posterior del ilion, etc. Es mejor utilizar la tibia para niños menores de dos años. Para los adultos, a menudo se utiliza la espina ilíaca posterosuperior. Este sitio es fácil de puncionar y fácil de aceptar para los pacientes. Se requiere una desinfección estricta antes de la punción para prevenir infecciones bacterianas. Además de la desinfección ultravioleta de la sala de punción y la desinfección de la piel, también se debe prestar atención a si el tiempo de desinfección de la bolsa de punción y los guantes ha expirado. Sea competente en el uso de guantes y evite tocar artículos no esterilizados con los guantes. A menudo hay una sensación de vacío cuando la aguja de punción ingresa a la cavidad medular. Debe haber un espacio de aproximadamente 1 ml en la jeringa antes de la succión; de lo contrario, el líquido medular entrará rápidamente en el espacio de la jeringa y no podrá extraerse. Si hay agua en la jeringa, séquela con una gasa esterilizada para evitar que las células se disuelvan. La cantidad de líquido a aspirar generalmente se controla en aproximadamente 0,2 ml. Debido a una aspiración excesiva, se diluye fácilmente con la sangre periférica.

Para algunos pacientes, cuando la aspiración es seca o el volumen de aspiración es demasiado pequeño, no extraiga la aguja inmediatamente. Puede ajustar la profundidad de la aguja mientras la retira o mover lentamente la aguja hacia afuera mientras la retira. y comprima el líquido de la médula restante en la aguja tanto como sea posible. Reduzca el dolor del paciente.

(2) Frotis: después de extraer la médula ósea, se debe inyectar inmediatamente en un portaobjetos de vidrio oblicuo para permitir que el exceso de sangre periférica fluya hacia abajo de forma natural. Utilice un empujador para raspar la parte superior de la médula ósea. líquido de médula con más partículas pequeñas en el otro lado. Empuje el portaobjetos sobre un portaobjetos de vidrio limpio. Es mejor remojar los portaobjetos en ácido nítrico diluido, enjuagarlos con agua y luego remojarlos en agua destilada. Evite hornearlos en hornos oxidados o guardarlos en cestas de alambre para reducir los falsos positivos en las manchas de hierro causadas por la contaminación por hierro. Al mismo tiempo, es mejor no volver a utilizar los portaobjetos que han sido analizados en busca de bacterias para el examen de médula ósea.

(3) Tinción: seleccione dos cortes de médula ósea con muchas partículas pequeñas y espesor uniforme. Después del secado natural, escriba el nombre del paciente, la fecha y la marca "BM" en la membrana medular más gruesa. Agregue de 8 a 12 gotas de la solución de tinción de Gary, use una bola de succión para inhalar y haga que cubra todo el frotis. Después de aproximadamente medio minuto, agregue de 5 a 10 gotas de diluyente Giemsa y luego use una bola de succión para inhalar para hacer la mezcla. dos Mezcle bien el líquido. Si aparece una película de aceite dorado, el efecto de teñido será mejor. El tiempo de teñido es generalmente de 10 a 20 minutos, que puede ser más corto en verano y más largo en invierno. Al enjuagar, los portaobjetos deben colocarse planos y enjuagarse lentamente con agua corriente. Además, debido a que puede haber residuos de tinte donde se sostiene el portaobjetos, se debe cambiar la posición de sujeción antes de enjuagar. Si la tinción es demasiado clara, contrateñir con diluyente Giemsa durante 3 minutos; si la tinción es demasiado profunda, deje caer el tinte de Wright sobre el frotis y enjuague inmediatamente. Lo mejor es que cada laboratorio explore su propia experiencia de teñido e intente lograr un teñido exitoso de una sola vez. Para unidades que no tienen solución de tinte Giemsa, se puede usar agua destilada y una pequeña cantidad de azur (o azul de metileno), pero el efecto de teñido no es tan bueno como el primero. El frotis teñido debe secarse de forma natural. No lo caliente ni lo seque, de lo contrario las células se desvanecerán y afectarán la observación. 4.7 Valor normal

Indica proliferación activa, y las células nucleadas representan del 0,0 al 0,10 de los glóbulos rojos maduros. (Generalmente dividido en cinco niveles: hiperplasia extremadamente activa, hiperplasia obviamente activa, hiperplasia activa, hiperplasia reducida e hiperplasia extremadamente reducida). 4.8 Importancia clínica de los resultados de laboratorio

El grado de hiperplasia de la médula ósea tiene una importante importancia orientativa para el diagnóstico y la observación terapéutica de enfermedades hematológicas.

(1) Proliferación extremadamente reducida: observada en la anemia aplásica típica.

(2) Proliferación reducida: observada en anemia aplásica y en un número muy pequeño de leucemias hipoproliferativas, tumores, leucemias, etc. cuando se suprime la médula ósea durante la quimioterapia.

(3) Proliferación activa: observada en personas sanas, enfermedades que no afectan principalmente al sistema hematopoyético, linfoma temprano, mieloma múltiple, enfermedades de la sangre que aún no han desarrollado trastornos del sistema hematopoyético y algunas leucemias atípicas. , infección bacteriana.

(4) Proliferación evidente y activa: observada en varios tipos de anemia proliferativa (el examen de sangre periférica muestra una disminución de los glóbulos rojos y la hemoglobina, mientras que las células de la médula ósea proliferan), como la anemia por deficiencia de hierro. , anemia hemolítica, anemia megaloblástica Anemia, pérdida aguda de sangre, etc., reacción de la médula ósea provocada por fármacos, infección bacteriana, leucemia aguda y crónica atípica, enfermedades mieloproliferativas, hiperesplenismo, etc.

(5) Proliferación extremadamente activa: observada en diversas leucemias agudas y crónicas típicas y en diversas enfermedades mieloproliferativas, así como tras el tratamiento con determinados agentes biológicamente activos. 4.9 Notas

(1) Clasificación de la hiperplasia de la médula ósea: proliferación extremadamente activa: la proporción de glóbulos rojos maduros a células nucleadas es 1:1 proliferación obviamente activa: la proporción de glóbulos rojos maduros a nucleadas; células es 10:1; proliferación activa: la proporción de glóbulos rojos maduros a células nucleadas es 20:l. Proliferación reducida: la proporción de glóbulos rojos maduros a células nucleadas es de 50:1. Proliferación extremadamente reducida: la proporción de glóbulos rojos maduros a células nucleadas es de 300:1. (Si la proporción de glóbulos rojos maduros y células nucleadas está entre los niveles superior e inferior, generalmente se informa como el nivel superior).

(2) Los resultados del examen del grado de hiperplasia de la médula ósea se ven afectados por el sitio de punción de la médula ósea y el líquido de la médula ósea. Se ve afectado por varios factores subjetivos y objetivos, como si está diluido, el número de células contadas y el nivel técnico del examinador. Si es necesario, se requieren múltiples. inspecciones en múltiples sitios para determinar. 4.10 Enfermedades relacionadas