Métodos comunes de manipulación de animales de experimentación en experimentos zoológicos
1. Numeración
Los animales de experimentación a menudo necesitan ser marcados para mostrar distinción. Existen muchos métodos de numeración y el método de marcado adecuado debe seleccionarse en función de factores como el número de especies animales y la duración del tiempo de observación.
(1) Método de listado: marque los números en una placa de metal redonda o cuadrada (preferiblemente aluminio o acero inoxidable, que puede usarse durante mucho tiempo sin oxidarse), o agrupe los números según los experimentos. Márquelo en la correa que sujeta el cuello del animal y asegure el collar al cuello del animal. La ley se aplica a animales grandes como los perros.
(2) Método de numeración: utilice unos alicates (también conocidos como alicates para numerar orejas) para marcar el número en la oreja del animal. Antes de imprimir, limpie las orejas con una bola de algodón humedecida en alcohol, apuñale el número con unos alicates para números de oreja y luego limpie el área de la marca con una bola de algodón humedecida en tinta negra disuelta en vinagre. Este método es adecuado para animales como conejos y perros con orejas relativamente grandes.
(3) Método de acupuntura: utilice una aguja del número 7 o del número 8 para sumergir una pequeña cantidad de tinta de carbón en la piel de las orejas, las extremidades delanteras y traseras y la cola, dejando una marca negra. en el sitio perforado. Este método es adecuado para ratas, ratones, cobayas, etc. Cuando el número de animales de experimentación es pequeño, también se puede utilizar para conejos, perros y otros animales.
(4) Método de teñido químico para pieles de animales: los productos químicos de teñido más utilizados son
Teñido de rojo: 0,5 solución neutra de rojo o magenta
Teñido de amarillo: 3- 5 solución de ácido pícrico
Teñido negro: solución alcohólica de alquitrán de hulla
Según las necesidades del número del grupo experimental, se puede utilizar una sustancia química para teñir. Es suficiente que los animales de experimentación tienen pelo en la espalda. Si el número de animales de experimentación es grande, se pueden seleccionar dos tintes. Este método es más adecuado para animales de experimentación con un período de experimentación corto, porque el tinte se desvanece fácilmente con el tiempo. Tampoco es adecuado para crías lactantes, porque es fácil que la madre animal muerda a las crías hasta matarlas o lama el tinte; .
(5) Método de esquila: Este método es adecuado para animales grandes y medianos, como perros, conejos, etc. El método consiste en utilizar un cuchillo de esquila para cortar un número en el costado o en el lomo del animal. Este método de numeración es claro y confiable, pero sólo es adecuado para observaciones a corto plazo.
(6) Método de perforación o muesca: puede utilizar una máquina perforadora para perforar un pequeño agujero en una posición determinada de la oreja del conejo para representar un número determinado. Si usa tijeras para cortar el espacio, debe torcerlo con talco después del corte para evitar que quede invisible después de curar. Este método se puede numerar del 1 al 9999. Este método se utiliza a menudo como un número de por vida cuando se cría una gran cantidad de animales.
2. Agrupación
(1) Principio de agrupación: cuando se realizan experimentos con animales, a menudo es necesario dividir los animales de experimentación seleccionados en varios grupos según las necesidades de la investigación. Los animales deben agruparse según el principio de asignación aleatoria, de modo que cada animal tenga las mismas posibilidades de ser asignado a cada grupo experimental y al grupo de control, a fin de evitar diferencias entre grupos y afectar los resultados experimentales, especialmente para realizar una conducción precisa. Las pruebas estadísticas deben realizarse de forma aleatoria.
El número de animales en cada grupo debe determinarse según la duración del período experimental, el tipo de experimento y los requisitos estadísticos. Si se trata de un experimento crónico o un experimento que requiere sacrificios periódicos de animales para realizar pruebas, es necesario seleccionar más animales para compensar el número de animales perdidos por muerte natural y que se cree que serán sacrificados, y garantizar que haya un número de animales que cumplen los requisitos estadísticos al final del experimento.
(2) Establecer un grupo de control: Se debe establecer un grupo de control al agrupar. 1. Grupo de control propio: se refiere a datos experimentales. Los datos relevantes de los propios animales de experimentación en las dos etapas antes y después del tratamiento experimental son los resultados experimentales del grupo de control y del grupo experimental respectivamente. Este método puede eliminar las diferencias individuales entre los organismos. 2. Grupo de control paralelo: Hay dos tipos: grupo de control positivo y grupo de control negativo. Los animales del grupo experimental reciben un tratamiento determinado, mientras que el grupo de control positivo es tratado de la misma manera, pero sin utilizar los fármacos ni métodos requeridos por el experimento, y el grupo de control negativo no recibe ningún tratamiento. 3. Al agrupar específicamente, se deben evitar los factores humanos. Todos los animales deben numerarse al azar, y luego los números pares deben ser el grupo A (grupo experimental) y los números impares deben ser el grupo B (grupo de control) o viceversa. Si desea dividirse en varios grupos, debe utilizar números aleatorios para representar grupos completamente aleatorios. 1. Depilación de animales de experimentación
En los experimentos con animales, el pelaje en ocasiones afecta a las operaciones experimentales y a las observaciones, por lo que debe ser eliminado. Los métodos para quitar el pelaje incluyen esquilar, depilar, afeitar y depilar.
(1) Método de esquila: El método de esquila consiste en arreglar al animal, primero remojar el pelaje con una gasa humedecida en agua y luego usar tijeras de esquilar para cortar el pelaje cerca de la piel. No levante el abrigo con las manos para evitar cortar la piel. El pelo cortado se debe concentrar en un recipiente para evitar que vuele por todos lados. Este método se usa comúnmente para recolectar sangre de animales como perros y ovejas o para sangrar vacas recién nacidas para preparar suero.
(2) Método de desplumado: El método de desplumado consiste en utilizar el pulgar y el índice para arrancar el pelaje. Este método se usa comúnmente cuando se inyecta en las venas del margen de la oreja o en las venas de la cola del conejo.
(3) Método de afeitado: El método de afeitado es un método de afeitar el pelaje del animal con una navaja. Si el animal tiene un pelaje largo, primero córtelo con unas tijeras, luego use un cepillo humedecido en agua tibia y jabón para remojar el área de afeitado y luego use una navaja para quitar el pelo. Esta ley se aplica a las áreas quirúrgicas expuestas.
(4) Método de depilación: El método de depilación es un método que utiliza productos químicos para eliminar el pelo de los animales. Primero, corte el pelaje, luego sumerja una bolita de algodón en el agente depilatorio y aplique una capa fina en el área deseada. Después de 2 a 3 minutos, lave el pelaje con agua tibia, séquelo con una gasa y luego aplique un. capa de grasa.
La fórmula del agente depilatorio indicado para perros y otros animales de gran tamaño es: 10g de sulfuro de sodio, 15g de cal viva, disueltos en 100ml de agua.
La fórmula del agente depilatorio adecuado para conejos, ratas y otros animales es: 1, 3 g de sulfuro de sodio, 1 g de jabón en polvo, 7 g de almidón, agregue la cantidad adecuada de agua para formar una pasta; sulfuro, 7 g de almidón, 4 g de azúcar, 5 g de glicerina, 1 g de bórax, añadir 75 ml de agua 3. Disolver 8 g de sulfuro de sodio en 100 ml de agua;
2. Administración en animales de experimentación
En experimentos con animales, para observar los cambios provocados por los fármacos en la función, el metabolismo y la morfología del cuerpo, a menudo es necesario inyectar fármacos en los animales. . Existen varias vías y métodos de administración, que pueden determinarse según el propósito del experimento, el tipo de animal de experimentación, la forma farmacéutica del fármaco y la dosis.
(1) Método de administración de la inyección
1. Al inyectar por vía subcutánea, pellizque suavemente la piel con el pulgar y el índice izquierdos, sostenga la jeringa con la mano derecha e inserte la aguja. y luego arreglarlo. Generalmente, a los ratones se les inyecta en la espalda o debajo de las axilas de las extremidades anteriores, a las ratas se les inyecta en la espalda o en la parte inferior del abdomen; a los conejillos de indias se les inyecta en la parte interna de los muslos, la espalda y otras áreas con menos grasa, a los conejos se les inyecta en la espalda o en la parte interna de los muslos, la espalda y otras áreas con menos grasa; en la base de las orejas; se pueden inyectar ranas en el saco linfático en la parte posterior de la columna del perro. La mayoría de las inyecciones se realizan en la parte exterior del muslo, al sacar la aguja, presione ligeramente el orificio de la aguja por un momento. que el medicamento se escape.
2. Inyección intradérmica: este método se utiliza para observar los cambios de permeabilidad de los vasos sanguíneos de la piel u observar reacciones intradérmicas. Por ejemplo, inyecte una cierta cantidad de solución de isótopos radiactivos, pigmentos, sustancias inflamatorias, medicamentos, etc. en la piel y observe su velocidad de desaparición y cambios en la circulación sanguínea local, que puede usarse como uno de los indicadores de observación de los vasos sanguíneos de la piel. permeabilidad. El método es: cortar el pelo en el lugar de la inyección del animal, desinfectarlo, usar una aguja de prueba cutánea para insertarla en la piel cerca de la piel, luego levantar la aguja hacia arriba e insertarla ligeramente nuevamente para inyectar la solución medicinal. Después de la inyección, se puede ver una pequeña protuberancia blanca en la superficie de la piel.
3. Inyección intramuscular: cuando se inyectan medicamentos que son insolubles en agua y suspendidos en aceite u otros disolventes en animales, se suele utilizar la inyección intramuscular. La inyección intramuscular generalmente se realiza en un lugar con músculos bien desarrollados y sin vasos sanguíneos grandes que lo atraviesen, generalmente las nalgas. Al inyectar, la aguja debe insertarse vertical y rápidamente en el músculo. Si no hay retorno de sangre, se puede realizar la inyección. Al administrar una inyección intramuscular a ratas y ratones, elija el músculo externo del muslo para la inyección.
4. Para la inyección intraperitoneal, primero fije al animal, limpie y desinfecte el abdomen con bolas de algodón con alcohol, luego inserte la aguja en el subcutáneo en el lado izquierdo o derecho del abdomen, avance aproximadamente 0,5 cm hacia adelante. a lo largo del subcutáneo y luego use la aguja para perforar la cavidad abdominal a través de los músculos abdominales en un ángulo de 45 grados con la piel. En este momento, sentirá una sensación de pérdida después de que se extraigan lentamente el líquido intestinal y la orina. Empuje la solución medicinal. Este método se utiliza comúnmente en ratas y ratones.
5. La inyección intravenosa consiste en inyectar el líquido medicinal directamente en el tubo intravenoso, para que pueda distribuirse por todo el cuerpo con la sangre y surta efecto rápidamente. Sin embargo, se excreta rápidamente y tiene un tiempo de acción corto.
6. Inyección en saco linfático: este método se utiliza a menudo en ranas. Hay varios sacos linfáticos debajo de la piel y los fármacos inyectados se absorben fácilmente. Los sacos linfáticos abdominales y los sacos linfáticos de la cabeza se utilizan a menudo como vías de administración de fármacos en las ranas. Generalmente, se utiliza el saco linfático abdominal para la administración. Al inyectar, la aguja se inserta desde el extremo superior del muslo de la rana, a través de la capa muscular del muslo hasta la capa muscular de la pared abdominal, y luego ingresa a la pared abdominal por vía subcutánea, es decir, en el saco linfático, y luego se inyecta la solución medicinal. .
(2) Método de administración oral
1. Método oral: Poner el fármaco en el pienso o disolverlo en agua de bebida para que el animal pueda tomarlo automáticamente. La ventaja de este método es que es simple y conveniente, pero la desventaja es que no puede garantizar una dosificación precisa. Generalmente es adecuado para la prevención y el tratamiento de enfermedades animales o los experimentos de toxicidad de ciertos medicamentos, y la creación de modelos animales de ciertas enfermedades humanas relacionadas con los alimentos.
2. Administración intragástrica: En experimentos agudos se suele utilizar la administración intragástrica. Este método tiene una dosis precisa. El método de sonda gástrica consiste en utilizar un dispositivo de sonda para verter el medicamento que se debe administrar en el estómago del animal. Un dispositivo de sonda gástrica consta de una jeringa y una aguja de sonda gástrica especial. La aguja de alimentación forzada para ratones mide aproximadamente de 4 a 5 cm de largo y 1 mm de diámetro. La aguja de alimentación forzada para ratas mide aproximadamente de 6 a 8 cm de largo y 1,2 mm de diámetro. Se suelda una pequeña bola de metal redonda a la punta de la aguja de sondaje y la bola de metal es hueca. El propósito de soldar la bola de metal es evitar que la aguja penetre en la tráquea o dañe el tracto digestivo. El extremo de bola de metal de la aguja está doblado en un ángulo de aproximadamente 20° para adaptarse a la curvatura fisiológica de la cavidad bucal y el esófago.
(3) Métodos de administración por otras vías
1. Administración por vía respiratoria: Los fármacos o gases venenosos en forma de polvo, gas, vapor o niebla deben administrarse a través del animal. tracto respiratorio. Por ejemplo, a los animales se les administra éter para anestesia por inhalación durante los experimentos y el humo de aserrín se utiliza para crear modelos animales de traqueítis crónica. Se utiliza especialmente en experimentos de toxicología.
2. Administración cutánea: Para identificar la absorción, efectos locales, sensibilización y fotosensibilidad de fármacos o venenos a través de la piel, se requiere la administración transdérmica. Por ejemplo, los conejos y los conejillos de indias suelen utilizar una determinada zona de la piel de la espalda para eliminar el pelo y luego aplican un determinado líquido medicinal sobre la piel, y el líquido medicinal se absorbe a través de la piel.
3. Administración intraespinal: Este método se utiliza principalmente para anestesia con conos o extracción de líquido cefalorraquídeo.
4. Administración intracerebral: este método se utiliza a menudo en experimentos con animales de microbiología. Se inoculan patógenos en el cerebro de los animales que se examinan y luego se observan varios cambios después de la inoculación.
5. Administración intrarrectal: Este método se utiliza frecuentemente para anestesia animal. Cuando se administra por vía intrarrectal a conejos, a menudo se utilizan tubos de goma para enema o catéteres urinarios número 14.
6. Administración intraarticular: Este método se utiliza a menudo para replicar modelos animales de artritis.