Red de conocimientos sobre prescripción popular - Conocimiento del confinamiento - ¿Es necesario volver a deshidratar las secciones de parafina antes de sellarlas? Obligatorio. \x0d\Después de completar una serie de trabajos de sección, las secciones deben teñirse y sellarse. Debido a que las secciones a teñir todavía están envueltas en parafina y la solución de tinción utilizada es una solución acuosa, se deben rehidratar antes de teñir. A diferencia de los pasos de deshidratación y limpieza de los bloques de tejido fijados, el corte en parafina se realiza disolviendo primero la parafina en xileno y luego pasándola a través de varios niveles de alcohol en agua. \x0d\Después de la tinción, si hay agua en el tejido, la luz debe ser opaca y la estructura del tejido no se puede observar claramente bajo el microscopio y debe estar deshidratado. \x0d\\x0d\ Déjame echar un vistazo a los folletos experimentales de nuestra escuela ~ Espero que te sean útiles ~ Pregúntame si no entiendes nada ~ \ x0d \ x0d \Experimento 1 Tecnología de seccionamiento integrado en parafina\ x0d \ x0d \Propósito del experimento: 1. Conozca los principios y pasos básicos de la tecnología de corte con parafina incorporada;\x0d\\x0d\2. Dominar las técnicas de inclusión y seccionamiento en parafina. \x0d\\x0d\Principio experimental:\x0d\\x0d\Todo el mundo ha observado cortes de tejidos animales y vegetales en experimentos biológicos. A través de un microscopio óptico podemos observar la estructura interna de las células (como núcleos celulares, citoplasma, estrías del tejido muscular, etc.) y la relación entre las células y la composición del tejido. Entonces, ¿cómo hacer este trozo? El proceso es complejo. Usamos 3-4 experimentos para aprender a hacer secciones de tejido. \x0d\x0d\Como todos sabemos, tenemos que estudiar la estructura interna de un objeto bajo un microscopio, lo cual es imposible de observar en estado natural, porque la mayoría de los animales y plantas son opacos y no se pueden observar directamente bajo un microscopio. Debemos someternos a un procesamiento especial para reducir el grosor y el volumen de la sustancia que se está observando, de modo que la luz pueda atravesarla antes de poder observarla con un microscopio. Hay dos métodos comúnmente utilizados: uno es el método sin corte, que utiliza métodos físicos o químicos para separar tejidos biológicos en células individuales o rodajas. Por ejemplo, observamos el epitelio oral y la epidermis del bulbo de cebolla en experimentos biológicos. La desventaja de este método es que no necesariamente se observan las relaciones entre las células. El otro es el rebanado, que consiste en cortar el ejemplar en rodajas finas con un cuchillo. \x0d\\x0d\El método sin corte es relativamente simple y no se presentará aquí una vez que lo aprenda. \x0d\x0d\El método de corte también se divide en método de corte a mano alzada y método de corte con rebanador. El método más simple de cortar es cortar material vegetal fresco directamente con un cuchillo, lo que se llama corte a mano alzada. El método de corte con microtomo consiste en utilizar un microtomo especial para cortar. El grosor de las rodajas puede ser tan fino como unas pocas micras. Por tanto, la invención y aplicación del microtomo también fue un factor importante en el nacimiento de la citología. \ x0d \ x0d \ El microtomo también utiliza un cuchillo (cuchillo para rebanar) para cortar el tejido. El tejido a cortar debe ser suave y duro, como cortar carne (fresca y congelada) con un cuchillo. Pero la mayoría de los materiales biológicos son blandos, por lo que para cortar rodajas finas, el material que se corta debe tener cierta suavidad y dureza. Algunos agentes de inclusión pueden lograr este propósito, como la parafina, que puede penetrar en el tejido cuando se derrite después de la solidificación, todo el tejido tiene cierta suavidad y dureza, lo suficiente para cortar secciones muy delgadas, por lo que se llama sección incrustada en parafina. También existen métodos de corte con colodión (se utiliza colodión como agente de inclusión) y métodos de criosección (el tejido se congela hasta alcanzar una cierta dureza). Entre ellos, el método de corte más utilizado es el corte incluido en parafina. Aquí nos centramos en la tecnología de corte incluido en parafina. \x0d\\x0d\ Equipo experimental: \ bloque, papel de filtro, solución de formaldehído, ácido pícrico, etc. \x0d\\x0d\ (2) Termostato, cera derretida, caja de papel, tabla de planchar, soporte, lámpara de alcohol, fósforos, pinzas, papel de filtro. (limpiar portaobjetos, afilar cuchillos, parafina líquida). \x0d\\x0d\ (3) Bisturí, tabla de madera, lámpara de alcohol, fósforos, hoja de sierra, bloque de madera, tabla de plástico, cuchillo para micrótomo, micrótomo, cepillo, pinzas, portaobjetos de vidrio, proteína glicerina, baño de agua a temperatura constante, termómetro, Plato blanco grande. \x0d\\x0d\Pasos experimentales:\x0d\\x0d\Preparar secciones de hígado, bazo, riñón e intestino delgado de ratón. \x0d\x0d\1. Recolección de material: La recolección de material se refiere al corte de materiales de tejido que se observarán de animales o plantas, como tallos y hojas de plantas, hígados de animales, intestinos delgados, etc.

¿Es necesario volver a deshidratar las secciones de parafina antes de sellarlas? Obligatorio. \x0d\Después de completar una serie de trabajos de sección, las secciones deben teñirse y sellarse. Debido a que las secciones a teñir todavía están envueltas en parafina y la solución de tinción utilizada es una solución acuosa, se deben rehidratar antes de teñir. A diferencia de los pasos de deshidratación y limpieza de los bloques de tejido fijados, el corte en parafina se realiza disolviendo primero la parafina en xileno y luego pasándola a través de varios niveles de alcohol en agua. \x0d\Después de la tinción, si hay agua en el tejido, la luz debe ser opaca y la estructura del tejido no se puede observar claramente bajo el microscopio y debe estar deshidratado. \x0d\\x0d\ Déjame echar un vistazo a los folletos experimentales de nuestra escuela ~ Espero que te sean útiles ~ Pregúntame si no entiendes nada ~ \ x0d \ x0d \Experimento 1 Tecnología de seccionamiento integrado en parafina\ x0d \ x0d \Propósito del experimento: 1. Conozca los principios y pasos básicos de la tecnología de corte con parafina incorporada;\x0d\\x0d\2. Dominar las técnicas de inclusión y seccionamiento en parafina. \x0d\\x0d\Principio experimental:\x0d\\x0d\Todo el mundo ha observado cortes de tejidos animales y vegetales en experimentos biológicos. A través de un microscopio óptico podemos observar la estructura interna de las células (como núcleos celulares, citoplasma, estrías del tejido muscular, etc.) y la relación entre las células y la composición del tejido. Entonces, ¿cómo hacer este trozo? El proceso es complejo. Usamos 3-4 experimentos para aprender a hacer secciones de tejido. \x0d\x0d\Como todos sabemos, tenemos que estudiar la estructura interna de un objeto bajo un microscopio, lo cual es imposible de observar en estado natural, porque la mayoría de los animales y plantas son opacos y no se pueden observar directamente bajo un microscopio. Debemos someternos a un procesamiento especial para reducir el grosor y el volumen de la sustancia que se está observando, de modo que la luz pueda atravesarla antes de poder observarla con un microscopio. Hay dos métodos comúnmente utilizados: uno es el método sin corte, que utiliza métodos físicos o químicos para separar tejidos biológicos en células individuales o rodajas. Por ejemplo, observamos el epitelio oral y la epidermis del bulbo de cebolla en experimentos biológicos. La desventaja de este método es que no necesariamente se observan las relaciones entre las células. El otro es el rebanado, que consiste en cortar el ejemplar en rodajas finas con un cuchillo. \x0d\\x0d\El método sin corte es relativamente simple y no se presentará aquí una vez que lo aprenda. \x0d\x0d\El método de corte también se divide en método de corte a mano alzada y método de corte con rebanador. El método más simple de cortar es cortar material vegetal fresco directamente con un cuchillo, lo que se llama corte a mano alzada. El método de corte con microtomo consiste en utilizar un microtomo especial para cortar. El grosor de las rodajas puede ser tan fino como unas pocas micras. Por tanto, la invención y aplicación del microtomo también fue un factor importante en el nacimiento de la citología. \ x0d \ x0d \ El microtomo también utiliza un cuchillo (cuchillo para rebanar) para cortar el tejido. El tejido a cortar debe ser suave y duro, como cortar carne (fresca y congelada) con un cuchillo. Pero la mayoría de los materiales biológicos son blandos, por lo que para cortar rodajas finas, el material que se corta debe tener cierta suavidad y dureza. Algunos agentes de inclusión pueden lograr este propósito, como la parafina, que puede penetrar en el tejido cuando se derrite después de la solidificación, todo el tejido tiene cierta suavidad y dureza, lo suficiente para cortar secciones muy delgadas, por lo que se llama sección incrustada en parafina. También existen métodos de corte con colodión (se utiliza colodión como agente de inclusión) y métodos de criosección (el tejido se congela hasta alcanzar una cierta dureza). Entre ellos, el método de corte más utilizado es el corte incluido en parafina. Aquí nos centramos en la tecnología de corte incluido en parafina. \x0d\\x0d\ Equipo experimental: \ bloque, papel de filtro, solución de formaldehído, ácido pícrico, etc. \x0d\\x0d\ (2) Termostato, cera derretida, caja de papel, tabla de planchar, soporte, lámpara de alcohol, fósforos, pinzas, papel de filtro. (limpiar portaobjetos, afilar cuchillos, parafina líquida). \x0d\\x0d\ (3) Bisturí, tabla de madera, lámpara de alcohol, fósforos, hoja de sierra, bloque de madera, tabla de plástico, cuchillo para micrótomo, micrótomo, cepillo, pinzas, portaobjetos de vidrio, proteína glicerina, baño de agua a temperatura constante, termómetro, Plato blanco grande. \x0d\\x0d\Pasos experimentales:\x0d\\x0d\Preparar secciones de hígado, bazo, riñón e intestino delgado de ratón. \x0d\x0d\1. Recolección de material: La recolección de material se refiere al corte de materiales de tejido que se observarán de animales o plantas, como tallos y hojas de plantas, hígados de animales, intestinos delgados, etc.

\ x0d \ x0d \ Preste atención a los siguientes puntos: \ x0d \ x0d \ (1) Frescura: cuanto antes se corte el material, mejor; de lo contrario, la composición, estructura y distribución celular de animales y plantas cambiará. \x0d\\x0d\(2) Prevenir lesiones artificiales, como tirar bruscamente, peso muerto, apretar, etc. , para evitar daños humanos. \x0d\\x0d\(3) Tamaño: 0,5 cm × 0,5 cm × 0,2 cm \ x0d \ \ x0d \ 2. Inmovilización: después de que el cuerpo muere o el tejido se separa del cuerpo, las células del tejido pueden volverse hipóxicas debido al cese del suministro de sangre, lo que provoca que se detenga el proceso de oxidación biológica. Por el contrario, las enzimas glicolíticas anaeróbicas están activas en las células y degradan proteínas, azúcares y grasas en los tejidos, lo que lleva a la autólisis del tejido. Además, los tejidos pueden corroerse por bacterias contaminadas. Por lo tanto, para mantener vivas las células y las estructuras tisulares, es necesario fijarlas adecuadamente. El objetivo de la fijación es preservar la forma, estructura y composición de las células de los tejidos para que sean similares a las células vivas. \x0d\\x0d\El fijador, una sustancia que fija el tejido, tiene el efecto de coagular o precipitar las proteínas del tejido, por lo que puede inhibir la actividad de las enzimas glicolíticas y la proliferación de bacterias, exhibiendo así la función de fijar el tejido. \ x0d \ x0d \Existen muchos tipos de fijadores, los más comunes son etanol, formaldehído, ácido acético glacial, ácido pícrico, ácido crómico, dicromato de potasio, cloruro de mercurio y ácido ósmico. Varios fijadores tienen diferentes efectos sobre las proteínas, grasas, azúcares, etc. Por lo tanto, un solo fijador no puede conservar todos los ingredientes, por lo que se suelen utilizar fijadores mixtos. \x0d\\x0d\Hay muchas descripciones de fijadores en varios libros, como propiedades químicas, principios de fijación, ventajas y desventajas de los tejidos fijos, etc. Debido a limitaciones de tiempo, no los presentaré en detalle aquí. Solo presentaré algunos fijadores comunes, sus fórmulas y usos. \x0d\\x0d\(1) Solución de formalina al 10%: 1 parte de solución de formaldehído + 9 partes de agua destilada\ x0d \ x0d \La solución de formaldehído que se vende en el mercado contiene aproximadamente entre un 37 y un 40% de formaldehído y un 10% de formalina. \x0d\\x0d\ Ámbito de aplicación: varias organizaciones. En los tejidos fijados con solución de formalina al 10%, los núcleos se tiñeron mejor, pero el citoplasma se tiñó mal. \x0d\\x0d\Procesamiento: los bloques de organización generalmente se fijan entre 16 y 24 horas y pueden usarse durante mucho tiempo o incluso almacenarse durante mucho tiempo. Los bloques de tejido fijados por un corto período de tiempo no necesitan limpieza y se pueden deshidratar directamente con alcohol al 70%. \x0d\\x0d\(2) Solución de Bouin: 75 ml de solución acuosa saturada de ácido pícrico (1,22%) (15)\ x0d \x0d \Solución de formaldehído 25 ml (5) \ \x0d\\x0d\Procesamiento: Puede repararse durante 24 horas o puede almacenarse en esta solución durante mucho tiempo. Enjuagar con agua corriente o deshidratar directamente con alcohol al 70% sin enjuagar. \x0d\\x0d\(3) Solución Zenkel: Solución A: cloruro mercúrico (cloruro mercúrico) 5g \ x0d \ x0d \dicromato de potasio 2,5g \ . \x0d\\x0d\Ámbito de aplicación: Es un excelente fijador para tejidos animales en general. Los tejidos, núcleos y citoplasma teñidos son bastante claros. \x0d\\x0d\Procesamiento: tiempo fijo de 16 a 24 h, luego enjuague con agua corriente durante la noche, lave el cloruro de mercurio y luego use alcohol al 70% para deshidratar. Antes de teñir las secciones, los precipitados de mercurio deben eliminarse con una solución de yodo. \x0d\\x0d\(4) Solución de Gendre: semen saturado con ácido pícrico (8,96 g/100 ml, 95 % de alcohol) 85 ml\x0d\\x0d\Solución de formaldehído 10 ml \ x0d \ 5 ml de ácido acético glacial\ x0d \ x0d \Ámbito de aplicación : Se utiliza para comprobar el glucógeno en los tejidos animales (porque el glucógeno es soluble en agua). \x0d\\x0d\Elaboración: Fijar durante 3-6h y deshidratar directamente con alcohol al 95%. \x0d\\x0d\(5) Solución de Carnoy: etanol absoluto 60ml \ x0d \ x0d \cloroformo 30ml \ x0d \ de ácidos nucleicos y cloroformo. \x0d\\x0d\Elaboración: Fijar durante 2-6h y deshidratar directamente con alcohol al 95%. \x0d\\x0d\También existen otros fijadores. La elección de la solución de fijación debe basarse en el material a fijar y el propósito del examen. \x0d\\x0d\3.