El concepto de prueba de inhibición del crecimiento en pruebas bacteriológicas.
Procedimientos operativos
1. Siembre las células en una placa de cultivo de 96 pocillos con una densidad de 4,0 × 10 8 /l y cultívelas en una incubadora con CO2 al 5 % a 37 °C. Hasta que las células se adhieren a la pared, se agrega vincristina para lograr las concentraciones finales 0, 0,1 y 60 respectivamente.
Cultivar en una incubadora de CO2 al 5 % a 2,37 ℃ durante 20 horas, agregar 20 μl de Mtt a cada pocillo y continuar cultivando durante 4 horas.
3. Aspirar el medio de cultivo, lavarlo una vez con medio libre de suero, añadir 100 μL de solución de lisis de MTT e incubar durante 8 horas en una incubadora que contenga 5% de CO2 a 37°C.
4. Después de que los cristales de color púrpura se hayan disuelto por completo, utilice un ensayo inmunoabsorbente ligado a enzimas para detectar la absorbancia de las células en cada grupo a A 570 nm/A 450 nm. A 570 nm/A 450 nm representa la viabilidad de las células. , y 0 μmol/L de fármaco es el grupo de control, y la tasa de supervivencia celular es del 100%. Los otros grupos son los siguientes: tasa de supervivencia = (absorbancia de cada grupo de concentración/absorbancia del grupo control) × 65438.
La tarea principal es preparar una solución nutritiva de PBS y preparar etiquetas de enzimas UV.